品牌 | SOLARBIO/索萊寶 | CAS | 詳詢 |
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分子式 | 詳詢 | 純度 | 詳詢 |
分子量 | 詳詢 | 貨號 | BC0060 |
規(guī)格 | 50管/24樣 | 供貨周期 | 現貨 |
主要用途 | Na+K+- ATP酶廣泛分布于植物、動物、微生物和細胞中,可催化ATP水解生成 | 應用領域 | 環(huán)保,化工,生物產業(yè),農業(yè),綜合 |
Na+K+-ATP酶活性檢測試劑盒說明書
可見分光光度法
貨號:BC0060
規(guī)格:50T/24S
產品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致,有疑問請及時聯系索萊寶工作人員。
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
試劑一 | 液體30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 液體4 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑三 | 粉劑×2支 | -20℃保存 |
試劑四 | 液體2 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑五 | 液體3mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑六 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑七 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑八 | 液體15 mL×1瓶 | 常溫保存 |
標準品 | 液體1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
試劑三:用時取1支加1 mL蒸餾水,現用現配。用不完的試劑-20℃分裝保存一周。
試劑六:用時加入15 mL蒸餾水,溶解后2-8℃保存兩周。
試劑七:用時加入15 mL蒸餾水,溶解后2-8℃保存兩周。
標準品:10 μmol/mL標準磷貯備液。將標準品20倍稀釋,即取0.1 mL標準品加1.9 mL蒸餾水充分混勻,配成0.5 μmol/mL標準磷應用液。
定磷劑的配制:按H2O:試劑六:試劑七:試劑八=2:1:1:1(體積比)的比例配制,配好的定磷劑應為淺黃色。若變色則試劑失效,若是藍色則為磷污染,定磷劑根據實驗用量現用現配。
注意:配試劑最好用新的燒杯、玻棒和玻璃移液器,也可以用一次性塑料器皿,避免磷污染。
產品說明:
Na+K+- ATP酶廣泛分布于植物、動物、微生物和細胞中,可催化ATP水解生成ADP和無機磷。
Na+K+-ATP酶分解ATP生成ADP及無機磷,通過測定無機磷的量來確定ATP酶活性。
ATP ADP + Pi
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、臺式離心機、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽/勻漿器、冰和蒸餾水。
操作步驟:
樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)
1、細菌、細胞或組織樣本的制備:
細菌或培養(yǎng)細胞:先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;按照每500萬細菌或細胞加入1mL試劑一,超聲波破碎細菌或細胞(功率200w,超聲3s,間隔10s,重復30次);8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
組織:稱取約0.1g組織,加入1mL試劑一進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
2、血清(漿)樣本:直接檢測。
二、測定步驟
1、分光光度計預熱30min以上,調節(jié)波長至660nm,蒸餾水調零。
2、酶促反應(在EP管中加入下列試劑)
試劑名稱 | 對照管 | 測定管 |
試劑一(μL) | 130 | 90 |
試劑二(μL) | 80 | 80 |
試劑三(μL) | 40 | 40 |
試劑四(μL) | - | 40 |
樣本(μL) | - | 200 |
混勻,37℃(哺乳動物)或25℃(其他物種)準確水浴10min | ||
試劑五(μL) | 50 | 50 |
樣本(μL) | 200 | - |
混勻,4000g,常溫離心10min,取上清液 |
3、定磷(在1.5mL EP管中依次加入下列試劑)
試劑名稱 | 空白管 | 標準管 | 對照管 | 測定管 |
0.5μmol/mL標準磷應用液(μL) | - | 100 | - | - |
上清液(μL) | - | - | 100 | 100 |
蒸餾水(μL) | 100 | - | - | - |
定磷試劑(μL) | 1000 | 1000 | 1000 | 1000 |
混勻,40℃水浴10 min,冷卻至室溫,在660nm處比色。分別記為A空白、A標準、A對照、A測定。每個測定管需設一個對照管,標準管和空白管只需測1-2次。 |
三、Na+K+-ATP酶活計算
1、血清(漿)Na+K+-ATPase活力的計算:
定義:規(guī)定每小時每毫升血清(漿)中Na+K+- ATP酶分解ATP產生1μmoL無機磷的量為一個酶活力單位。
Na+K+-ATP酶活力(U/mL)= C標×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)×V總÷V樣÷T
=7.5×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)
2、組織、細菌或細胞中Na+K+- ATPase活力的計算:
(1)按蛋白濃度計算:
定義:規(guī)定每小時每毫克組織蛋白中Na+K+- ATP酶分解ATP產生1μmoL無機磷的量為一個酶活力單位。
Na+K+-ATP酶活力(U/mg prot)= C標×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)×V總÷(Cpr×V樣)÷T
=7.5×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)÷Cpr
(2)按樣本質量計算:
定義:規(guī)定每小時每克組織中Na+K+-ATP酶分解ATP產生1μmoL無機磷的量為一個酶活力單位。
Na+K+-ATP酶活力(U/g 質量)= C標×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)×V總÷(V樣÷V樣總×W)÷T
=7.5×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)÷W
(3)按細菌或細胞數量計算:
定義:規(guī)定每小時每1萬個細菌或細胞中Na+K+-ATP酶分解ATP產生1μmoL無機磷的量為一個酶活力單位。
Na+K+-ATP酶活力(U/104 cell)= C標×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)×V總÷(V樣÷V樣總×500)÷T
=0.015×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)
C標:標準管濃度,0.5μmol/mL;V總:酶促反應總體積,0.5mL;V樣:加入樣本體積,0.2mL;V樣總:加入試劑一體積,1mL;T:反應時間,1/6小時;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本質量,g;500:細菌或細胞總數,500萬。
注意事項:
1、由于每一個樣都必須做對照,本試劑盒50管保證測 24份Na+K+-ATP酶。
2、此法具有微量、靈敏、快速的特點。所以對測定所用試管要求嚴格無磷。
實驗實例:
取0.1g小鼠心臟加入1mL試劑一進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min,取上清置冰上,之后按照測定步驟操作,測得計算A測定=1.216,A對照=0.842,A標準=0.398,A空白管=0.004,按樣本質量計算酶活得:
Na+K+-ATP酶活力(U/g 質量)=7.5×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)÷W=71.19 U/g 質量。
取0.1g稗草加入1mL試劑一進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min,取上清置冰上,之后按照測定步驟操作,測得計算A測定=0.474,A對照=0.403,A標準=0.398,A空白=0.004,按樣本質量計算酶活得:
Na+K+-ATP酶活力(U/g 質量)=7.5×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)÷W=13.52 U/g 質量。
取200μL小鼠血漿稀釋2倍,直接檢測,A測定管=0.958,A對照=0.906,A標準=0.398,A空白=0.004,按液體體積計算酶活得:
Na+K+-ATP酶活力(U/mL)=7.5×(A測定-A對照)÷(A標準-A空白)×2(稀釋倍數)=1.98 U/mL。
相關發(fā)表文獻:
Fangzhou Chen,Ying Zhao,Huizhao Chen,et aL. MicroRNA-98 reduces amyLoid β-protein production and improves oxidative stress and mitochondriaL dysfunction through the Notch signaLing pathway via HEY2 in ALzheimer's disease mice. InternationaL JournaL of MoLecuLar Medicine. October 2018;(IF2.928)
Wanxiu Cao,Jing Li,Yaoxian Chin,et aL. Transcriptomic anaLysis reveaLs effects of fucoxanthin on intestinaL
gLucose transport. JournaL of FunctionaL Foods. October 2018;(IF3.197)
Li M, Jiang C, Zhang Y, et al. Activities of Amphioxus GH-like protein in osmoregulation: insight into origin of vertebrate GH family[J]. International journal of endocrinology, 2017, 2017.
參考文獻:
[1] Luo L G, MacLean D B. Effects of thyroid hormone on food intake, hypothalamic Na/K ATPase activity and ATP content[J]. Brain research, 2003, 973(2): 233-239.
[2] Cornelius F. Modulation of Na, K-ATPase and Na-ATPase activity by phospholipids and cholesterol. I. Steady-state kinetics[J]. Biochemistry, 2001, 40(30): 8842-8851.
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